• 參會報名
  • 會議通知
  • 會議日程
  • 會議嘉賓
  • 參會指南
  • 邀請函下載

首頁 > 商務會議 > 醫療醫學會議 > CRISPR/Cas9基因編輯技術培訓班2019(9月杭州班) 更新時間:2019-08-27T17:39:17

大會站點分布:
(點擊可切換)
CRISPR/Cas9基因編輯技術培訓班2019(9月杭州班)
收藏3人
分享到

CRISPR/Cas9基因編輯技術培訓班2019(9月杭州班) 已截止報名

會議時間:2019-09-25 09:00至 2019-09-26 17:00結束

會議地點: 杭州  全季酒店(杭州文三路店)  浙江省杭州市西湖區文三路121號 周邊酒店預訂

會議規模:50人

主辦單位: 北京微旋基因技術有限公司

發票類型:增值稅普通發票
領取方式:現場領取 
發票內容: 會議費 會務費 會議服務費 會議注冊費 注冊費 培訓費 
參會憑證:現場憑電話姓名參會

行業熱銷熱門關注看了又看 換一換

        會議通知

        會議內容 主辦方介紹


        CRISPR/Cas9基因編輯技術培訓班2019(9月杭州班)

        CRISPR/Cas9基因編輯技術培訓班2019(9月杭州班)宣傳圖

        CRISPR/Cas9基因編輯技術培訓班

        邀請函

        尊敬的???????? :您好!

        CRISPR是生物科學領域的顛覆性技術,使用高效、迅速且簡單,在生物醫學研究領域引起一場巨變,并因此席卷全球實驗室。研究人員利用它改造人類基因以消除疾病,創造生命力更加頑強的植物,并且消滅病原體。《Science》2017年度突破、《Nature》2017年度人物均授予了CRISPR相關技術的突破,CRISPR技術再一次成為生命科學的焦點。

        隨著近幾年的發展,研究者開發出越來越多基于CRISPR的新型基因編輯技術,例如CRISPRa/i,基因定位,表觀遺傳修飾,單堿基基因編輯系統(BE2,BE3,ABE等),CRISPR/C2c2基因突變檢測系統等。CRISPR/Cas9系統的應用更加便捷、高效,也更廣泛,目前該技術成功應用于人類細胞、斑馬魚、小鼠以及細菌等基因組精確修飾,成為科研人員的強大工具,基于CRISPR臨床實驗已經取得初步成功。

        為了讓更多的科研人員及時全面的掌握CRISPR最新技術,并應用的相應的領域研究中。特于2019年9月25日至26日在全季酒店(杭州文三路店)舉辦CRISPR/Cas9基因靶向修飾技術培訓班。免費獲得一份CRISPR/Cas9敲除質粒載體(可以用于哺乳動物、植物、真菌、細菌、斑馬魚、線蟲等,共60種)。免費贈送sgRNA離線設計軟件(有基因組DNA序列即可設計!學員需自帶電腦)。


        舉辦時間:

        2019年9月25日至26日

        舉辦地點

        全季酒店(浙江省杭州市西湖區文三路121號全季酒店杭州文三路店)

        參加對象

        從事醫學、生命科學、農學等領域科研工作者和高校教師及研究生。

        授課方式

        理論講授和實際演練緊密結合。

        承辦單位:???????? ???????????????????????

        北京微旋基因技術有限公司

        CRISPR 質 粒 清 單

        Plant

        #50588

        pHSN401

        CRISPR/Cas based plant genome editing and gene regulation; expresses 3×FLAG-NLS-zCas9-NLS, gRNA scaffold for insertion of target sequence (AtU6-26 promoter), Hyg resistance

        #63142

        pRGEB32

        (Empty Backbone) Express sgRNA/PTG with rice snoRNA U3 promoter and Cas9 with rice ubiquitin promoter for Agrobacterium-mediated transformation.

        #51295

        pRGEB31

        (Empty Backbone) Binary vector derived from pRGE31. Deliver sgRNA and Cas9 into plant. by agrobacterium mediated transformation.

        Insect

        #49330

        pAc-sgRNA-Cas9

        Expresses sgRNA and Cas9-Puro in Drosophila S2 cells

        C.elegans

        #47549

        pDD162

        Cas9 + sgRNA plasmid that can be modified to cleave any Cas9 target site in the C. elegans genome.

        Yeast

        #43804

        p415

        Human Optimized S. pyogenes Cas9

        Bateria

        #42875

        pCRISPR

        A crRNA expression plasmid for targeting a specific sequence

        #61737

        pCRISPomyces-2

        Streptomyces expression of codon-optimized Cas9 and custom gRNA

        Zebrafish

        #47929

        pCS2-nCas9n

        expression of an optimized Cas9 for genome-editing in zebrafish

        Mammalian

        #52970

        FokI-dCas9

        Expresses Fok1 nuclease domain fused to catalytically inactive Cas9 DNA-binding domain in mammalian cells

        #61591

        PX601

        A single vector AAV-Cas9 system containing Cas9 from Staphylococcus aureus (SaCas9) and its sgRNA.

        #42230

        PX330

        A human codon-optimized SpCas9 and chimeric guide RNA expression plasmid.

        #48138

        PX458

        Cas9 from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

        #48139

        PX459

        Cas9 from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA (V2.0)

        #48140

        PX461

        Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-EGFP, and cloning backbone for sgRNA

        #48141

        PX462

        Cas9n (D10A nickase mutant) from S. pyogenes with 2A-Puro, and cloning backbone for sgRNA

        #50661

        pCW-Cas9

        Inducible lentiviral expression of SpCas9

        #52963

        LentiGuide-puro-Vector

        Expresses S. pyogenes CRISPR chimeric RNA element with customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter. Lentiviral backbone.

        #52962

        lentiCas9-Blast

        Expresses human codon-optimized S. pyogenes Cas9 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. 3rd generation lentiviral backbone.

        #69982

        pY010

        ?Expresses humanized AsCpf1

        #19319

        pLJM1-EGFP

        (Empty Backbone) 3rd gen lentiviral vector for EGFP fusion; PGK driven puromycin

        #12260

        psPAX2?

        Lentivirus package plasmids

        #61427

        lenti sgRNA(MS2)_zeo

        (Empty Backbone) 3rd generation lenti sgRNA cloning backbone with MS2 loops at tetraloop and stemloop 2 and EF1a-zeo resistance marker. Contains BsmBI sites for insertion of spacer sequences.

        #61426

        lenti MS2-P65-HSF1_Hygro

        lenti vector encoding the MS2-P65-HSF1 activator helper complex with a 2A Hygro resistance marker (EF1a-MS2-p65-HSF1-2A-Hygro-WPRE)

        #61425

        lenti dCAS-VP64_Blast

        3rd generation lenti vector encoding dCAS9-VP64 with 2A Blast resistance marker (EF1a-NLS-dCas9(N863)-VP64-2A-Blast-WPRE)

        #71814

        eSpCas9(1.1)

        Expresses high specificity SpCas9. Px330-like plasmid.

        #47327

        pET-28b-Cas9-His

        For in vitro expression and purification of Cas9 protein

        #62934

        pET-NLS-Cas9-6xHis

        Expression of NLS-Cas9-6xHis in bacterial cells

        86840

        pJH373

        mamalian expression of AcrIIA2

        84750

        Lenti-AsCpf1-Blast

        Expresses human codon-optimized AsCpf1 protein and blasticidin resistance from EFS promoter. Lentiviral backbone.

        84752

        Lenti_gRNA-Puro

        (Empty Backbone) Expresses Cpf1 customizable sgRNA from U6 promoter and puromycin resistance from EF-1a promoter

        79145

        pCAG-eCas9-GFP-U6-gRNA

        All-in-one CRISPR/Cas9 vector with high-fidelity eSpCas9 expression in human pluripotent stem cells

        84745

        pY30

        Expresses huAsCpf1-P2A-puro and crRNA guide

        84743

        pY094

        Expresses huAsCpf1-T2A-GFP and crRNA guide

        84741

        pY026

        Expresses huAsCpf1 and crRNA guide

        79152

        pC003

        LshC2c2 locus in pACYC184 with BsaI sites for spacer cloning

        79150

        pC001

        Expresses human codon-optimized LshC2c2 for purification in E. coli

        64324

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mCherry

        Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to mCherry via a T2A peptide

        64222

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-mcherry-P2A-Ad4E4orf6

        Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked via T2A to mCherry linked to the Ad4 E4orf6 gene via P2A

        64218

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP-P2A-Ad4E1B

        Expression vector for sgRNA and for Expression of Cas9 linked to BFP via T2A linked to Ad4 E1B via P2A

        64323

        pU6-(BbsI)_CBh-Cas9-T2A-BFP

        Expression vector for sgRNAs cloned into the BbsI sites and for expression of Cas9 linked to BFP via a T2A peptide

        51023

        pSLQ1658-dCas9-EGFP

        Template for NLS-dCas9-NLS-EGFP fusion protein for CRISPR imaging (the recipient vector can be TetON 3G promoter system)

        64108

        pHAGE-TO-dCas9-3XmCherry

        Expression of Sp dCas9-3XmCherry in mammalian cells

        查看更多

        會議日程

        (最終日程以會議現場為準)


        課程安排:

        日期

        時間

        培訓內容

        授課老師

        9月24日

        15:00-19:00

        培訓報到

        劉剛

        博士

        9月25日

        9:00-11:30

        理論講解:

        一、基因編輯技術簡介(三代基因編輯工具)

        1. ZFN 2.TALEN 3.CRISPR

        二、CRISPR/Cas9基因編輯技術原理

        1. CRISPR/Cas9發現歷史

        2. CRISPR/Cas9作用機制解析

        3. CRISPR/Cas9系統改造策略

        13:00-17:00

        理論講解

        一、sgRNA在線設計構建實戰演練(1.靶基因序列查找2.sgRNA在線設計合成)

        二、CRISPR/Cas9轉染策略:

        1.生物轉染(慢病毒、腺相關病毒等)

        2.物理轉染 (電轉核酸/RNP、顯微注射、基因槍)

        3.化學轉染 (脂質體、陽離子聚合物)

        三、CRISPR/Cas9 sgRNA效率檢測,脫靶檢測及解決策略

        1、高保真Cas9(espCas9、Hifi-Cas9、Cluster1-Cas9)

        9月26日

        9:00-11:30

        理論講解:

        一、CRISPR技術應用解析

        1.基因敲除(單基因敲除、多基因敲除、大片段刪除、多靶點sgRNA載體構建策略)

        2.基因敲入實戰演練(gRNA選擇、同源臂設計、導入,長片段導入策略/提高基因敲入效率策略,PITCh、HITI)

        3.CRISPR在轉錄調控中的應用(轉錄激活、轉錄抑制系統)

        4.CRISPR靶基因標記定位

        二、CRISPR案例解析

        1.基因敲除在小鼠模型構建、植物、細胞、細菌、真菌等中的應用案例解析

        2.基于CRISPR的全基因組基因敲除高通量篩選策略

        3.基于CRISPR的全基因組轉錄激活/抑制高通量篩選策略

        三、CRISPR/Cas9與基因沉默技術(siRNA、shRNA)系統比較。

        13:00-17:00

        理論講解:

        一、單堿基基因編輯技術簡介及在基因治療中的應用

        1.HF2-BE2 2.BE3系統 3.ABE系統4.單堿基基因編輯脫靶克服。

        二、基因CRISPR的基因檢測系統

        1、CRISPR-Cpf1系統介紹(DETECTR)

        2、CRISPR-C2c2系統介紹(SHERLOCK)

        三、CRISPR/Cas9系統在腫瘤和遺傳病治療中應用解析

        1、CRISPR結合免疫檢查點抑制劑治療腫瘤

        2、單基因遺傳病治療(DMD、先天性黑朦、地中海貧血等)

        3、CRISPR治療HIV-基因編輯嬰兒解析

        查看更多

        會議嘉賓

        (最終出席嘉賓以會議現場為準)


        劉剛博士

        2008年博士畢業于中國科學院上海生命科學研究院,從事腫瘤干細胞,細胞衰老,腫瘤轉移等細胞作用網絡和通路的研究,并作為骨干研究人員參加了973計劃項目、國家自然科學基金重點項目、在香港中文大學做為作為Postdoc和Research fellow,從事研究工作。先后Nature Genetics,cell research、PLOS one等期刊發表論文十余篇。

        查看更多

        參會指南

        會議門票 場館介紹


        收費標準

        注冊費: 2800元/人,2019年9月10號之前匯款報名可以優惠至:2600元/人。包括學費、資料費、試劑耗材費、其他材料費;免費提供工作午餐,可協助安排住宿,住宿費用自理。

        推薦住宿地點:全季酒店,299元/標間,319元/大床。

        查看更多

        溫馨提示
        酒店與住宿: 為防止極端情況下活動延期或取消,建議“異地客戶”與活動家客服確認參會信息后,再安排出行與住宿。
        退款規則: 活動各項資源需提前采購,購票后不支持退款,可以換人參加。

        活動家為本會議官方合作
        報名平臺,您可在線購票

        會議支持:

        • 會員折扣
          該會議支持會員折扣
          具體折扣標準請參見plus會員頁面
        • 會員返積分
          每消費1元累積1個會員積分。
          僅PC站支持。
        • 會員積分抵現
          根據會員等級的不同,每抵用1元可使用的積分也不一樣,具體可參見PLUS會員頁面。 僅PC站支持。

        會議地點 查看大圖

        部分參會單位

        主辦方沒有公開參會單位

        快捷下單

        活動家_小程序快捷下單

        微信掃一掃
        使用小程序快捷下單

        郵件提醒通知

        分享到微信 ×

        打開微信,點擊底部的“發現”,
        使用“掃一掃”即可將網頁分享至朋友圈。

        錄入信息

        請錄入信息,方便生成邀請函

        一肖中特虎猴